卵巢癌作为一种常见的妇科肿瘤,由于生殖系统内早期检测困难,导致其死亡率居高不下。类器官技术在药物反应评估中至关重要,可助力个性化治疗,但组织碎片培养的类器官大小与成分构成等均一性不足、培养时间长、类器官数目通量较低的问题,严重培养限制了其在高通量药物筛选、药物敏感性测试等方面的实际应用。
在Cell Organoid 期刊发表的题为:Crossroad of ovarian cancer organoid culture: Single cell suspension and mechanically sheared fragment 的研究论文中,研究团队开发了一种基于单细胞悬液的卵巢癌类器官培养技术,可在3天内形成尺寸均一的类器官(直径较传统机械剪切法提升10倍)。转录组分析证实其与原肿瘤高度相似,药物测试显示高重复性响应(CV<40%),为卵巢癌个性化药物筛选提供了可靠的高通量平台。

研究背景
卵巢癌是女性生殖系统中常见的恶性肿瘤之一,由于早期症状不明显,导致其难以被及时发现和诊断。此外,卵巢癌具有高度异质性,表现为不同的组织学亚型和广泛的分子表达模式,这使得治疗变得复杂,并容易产生化疗耐药性,亟需个性化治疗策略。
患者来源类器官(PDOs)能模拟肿瘤特性,但传统机械剪切法产生的类器官尺寸不均一(常>3mm),导致药物渗透不一致,限制其在96/384孔板的高通量药物筛选应用。
研究方法
1. 样本采集与处理
◾组织来源:4例未化疗卵巢癌患者术后新鲜组织(经伦理批准:kyy2023-06)。
◾保存条件:4℃运输,3天内处理。
2. 类器官培养方法
◾机械剪切法:
组织剪碎至≤3mm片段 → 接种于卵巢癌专用培养基(LSTO001004,LiSheng)→ 每5天半量换液。
◾单细胞悬液法:
酶解机械法类器官(Organoid Dissociation Reagent I,LiSheng)→ 40μm滤网过滤 → 离心获得单细胞 → 接种至96孔超低吸附板(Corning 7007)。
3. 分析技术
◾形态学分析:倒置显微镜(Leica DMii)成像 + ImageJ量化尺寸。
◾转录组分析:
RNA提取(TRIzol)→ 测序(Honsun公司)→ FPKM标准化 → PCA/热图分析(Morpheus)→ GSEA通路富集。
◾药物测试:
铂/紫杉醇梯度浓度(0/5/25/50 μM)处理 → CellTiter-Glo 3D检测活性 → 变异系数(CV)计算。
◾组织学验证:H&E染色(甲醛固定 → OCT包埋 → 10μm切片)。
◾Matrigel包埋:单细胞悬液与Matrigel按3:2混合固化(37℃)→ 长期培养观察。
4. 统计方法
GraphPad 8分析,数据表示为均值±标准差(≥3次重复)。
研究结论
1. 单细胞悬液法实现尺寸均一的类器官
▶单细胞在96孔板中3天自组装成球,8天后OVA-37样本体积增长10倍(图1b-d)。

▶尺寸变异显著低于机械剪切法(*p*<0.05,图3c),适合高通量筛选。

2. 转录组保真度验证
▶PCA显示患者间差异主导变异(>方法间差异,图2a-b)。
▶关键通路(如细胞周期)表达高度相似(图2c, 2d),仅TGF-β和紧密连接通路在机械剪切法中略强(因保留更多细胞间相互作用)(图2e)。



3. 药物响应可靠性
单细胞法类器官在卡铂处理中:
▶5μM时短暂刺激代谢活性,≥25μM引发剂量依赖性毒性(图4b-d)。
▶四重复实验CV<40%,符合高通量标准(图4c)。


4. Matrigel包埋兼容性
单细胞法类器官在Matrigel中生长15天,形态与悬浮培养无差异(H&E验证,图5b-c)。


总结
单细胞悬液法成功培育出尺寸均一、转录组稳定、药物响应可靠的卵巢癌类器官,突破类器官尺寸均一性瓶颈,为卵巢癌个性化治疗提供了更可靠的平台,有助于发现新的治疗靶点、定制治疗方案和减少不良反应。
Cytoplay® PDO肿瘤类器官个性化药筛
Cytoplay®PDO基于专有的高通量阵列式软基质细胞芯片,对肿瘤组织(含穿刺组织)酶解后获得的单细胞悬液进行芯片阵列和细胞培养。数万至几十万个孔(依据细胞数量)中的共培养条件,可以为单个肿瘤干细胞形成肿瘤球提供较好的条件。单个肿瘤干细胞短至3-5天即可形成大量肿瘤细胞球,再经过优化后的微流控分选技术,获取大量均一化的肿瘤细胞球,为后续肿瘤药敏等研究提供充足的样本。
五大核心优势
✔标准化/均一化
无基质胶设计 + 均一微孔工艺 + 微流控分选,药敏变异系数<5%,远低于目前行业平均水平15%-30%。
✔高通量
数万均一微孔/芯片,最高可承载数百万细胞,平均生成上万肿瘤干细胞球,适配大规模药筛。
✔周期短
3-5天成球,8-10天完成药筛,效率提升50%。
✔样本需求少
穿刺组织即可(100-150mg),解决临床样本稀缺痛点。
✔代表性强(个性化药筛)
单肿瘤干细胞来源成球,保留“癌王”特性,临床药敏一致性≥90%。
【原文出处】
Li L, Liu J, Cao Q, et al. Crossroad of ovarian cancer organoid culture: Single cell suspension and mechanically sheared fragment. Cell Organoid, 2024
原文链接:https://doi.org/10.26599/CO.2024.9410005
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